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2024-01-03 10:25:11
實(shí)驗(yàn)干貨:如何做好一張高質(zhì)量的HE染色切片

01

簡(jiǎn)介


經(jīng)過(guò)包埋的組織在普通玻片上進(jìn)行切片后,可以使用HE染色,這種方法通過(guò)區(qū)分細(xì)胞核和細(xì)胞質(zhì)的酸堿性特性,將它們?nèi)境商焖{(lán)和玫紅兩種鮮艷的顏色,以滿(mǎn)足形態(tài)學(xué)觀(guān)察的需求。如果需要進(jìn)行免疫組化或熒光分析,那么在切片時(shí)需要在玻片上使用粘片劑,以防止在多個(gè)操作步驟中出現(xiàn)掉片的情況。     


02

基本原理


HE染色方法之所以廣泛應(yīng)用于細(xì)胞染色領(lǐng)域,是因?yàn)樗诨瘜W(xué)反應(yīng)之外還涉及物理吸附和吸收效應(yīng),這些效應(yīng)共同促成了HE染色的出色核漿對(duì)比效果。這個(gè)方法利用了蘇木素染色液的堿性屬性,將細(xì)胞染成藍(lán)色,以及伊紅的酸性屬性,將細(xì)胞染成紅色。結(jié)果是,細(xì)胞核呈藍(lán)色,細(xì)胞質(zhì)呈紅色。這兩種不同的染色液通過(guò)改變細(xì)胞的折射率,使細(xì)胞在光鏡下呈現(xiàn)出不同的顏色,從而呈現(xiàn)出細(xì)胞圖像。


圖片

圖片來(lái)源于網(wǎng)絡(luò)


03

HE染色實(shí)驗(yàn)材料與儀器


器材:染缸、蓋玻片、組織切片
試劑:① C8H10、② 乙醇、③ 蘇木素染液、④ 蒸餾水、⑤ 中性樹(shù)膠


04

HE染色操作步驟


將已烘干的切片在C8H10中脫蠟 5~10 分鐘,兩次。


移入C8H10和純乙醇(1:1)混合液中 5 分鐘左右(如經(jīng)二次C8H10脫蠟,此步可省略)。


移入 100%、95%、85%、70% 乙醇中,各級(jí)為 2~5 分鐘。最后經(jīng)蒸餾水轉(zhuǎn)入染色液。


自己配制或商業(yè)化購(gòu)買(mǎi)的蘇木素染液染色 5~15 分鐘。


流水沖洗 15~30 分鐘,或者在 0.75% 氯化銨溶液中短時(shí)間堿化或藍(lán)化,使細(xì)胞核呈藍(lán)色。


蒸餾水短洗。


依次經(jīng) 70%、85%、95% 乙醇脫水,各級(jí)為 2~3 分鐘。


0.1%~0.5% 伊紅染液染色 1~5 分鐘,若著色困難,可在每 100 ml 染液中加入 1~2 滴無(wú)水乙酸,使易著色且不易脫色。


依次快速通過(guò) 95% 和 100% 乙醇洗去多余的伊紅染液,在濃度 95% 以下的乙醇中伊紅易脫色,應(yīng)適當(dāng)縮短時(shí)間。


C8H10透明(二次),共約 10 分鐘。


封片擦去切片周?chē)嘤郈8H10,切勿干涸,迅速滴加適量中性樹(shù)膠,再加蓋玻片封固,避免產(chǎn)生氣泡。在通風(fēng)櫥中吹干C8H10,封片穩(wěn)定后轉(zhuǎn)移到片盒中保存。


05

案例展示


圖片

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06

注意事項(xiàng)

當(dāng)進(jìn)行免疫組化或熒光分析時(shí),在切片過(guò)程中需要應(yīng)用粘片劑于玻片,以確保切片在多個(gè)處理步驟中不會(huì)脫落或掉落。


07

常見(jiàn)問(wèn)題


1.切片染色不勻

1.1組織取材固定不當(dāng)。

如組織取材過(guò)大或過(guò)厚,不能將組織完全固定,組織切片染色后出現(xiàn)外周固定好的部分易著色,而中間未固定好的組織,細(xì)胞著色模糊,使染色不均。在送檢的標(biāo)本中,及時(shí)用4%中性甲醛對(duì)標(biāo)本固定,固定液應(yīng)是標(biāo)本的4倍。大標(biāo)本應(yīng)切開(kāi)固定。

1.2切片薄厚不均或有橫紋。

切片刀有缺口時(shí),易造成斷裂,破碎和不完整;切片刀傾角過(guò)大上卷,不能連在一起,過(guò)小則切片皺起。

或因螺絲松動(dòng)產(chǎn)生振動(dòng)切片易造成厚薄不均或技術(shù)人員手臂搖動(dòng)切片機(jī)頭力量不均易造成橫紋。

切片時(shí)檢查切片機(jī)螺母是否擰緊,切片刀角度是否過(guò)大或過(guò)小即可。

1.3組織脫水,透明和浸臘處理不當(dāng)

(1)組織脫水用的各級(jí)乙醇未能保證相應(yīng)濃度使組織脫水不徹底。

(2)二甲苯內(nèi)的時(shí)間過(guò)長(zhǎng)組織易碎也無(wú)法切出好片子。

(3)浸臘溫度過(guò)高,組織變脆也不利切片染色。

1.4染色過(guò)程處理不當(dāng)

(1)組織切片脫臘不徹底,如二甲苯時(shí)間過(guò)久 ,無(wú)水乙醇不純或時(shí)間過(guò)久,室溫低,組織切片上的石蠟沒(méi)有全部除掉時(shí),含臘部分不著色或著色過(guò)淺染色液試劑量少,組織切片沒(méi)有全部浸到 。

(2)組織切片上在撈片時(shí)有氣泡,則氣泡內(nèi)組織可能染色不均。


2.切片染色模糊不清

2.1取材:

組織標(biāo)本已發(fā)生自溶或取材后沒(méi)及時(shí)固定或固定液濃度不夠;另固定前干枯標(biāo)本,染色后易出現(xiàn)灰染現(xiàn)象,很難補(bǔ)救。

2.2固定

(1)固定劑對(duì)組織有一定媒染作用,它既可與蛋白結(jié)合又能與染料結(jié)合,可增強(qiáng)著色能力,同時(shí)能沉淀和凝固細(xì)胞內(nèi)成分,使細(xì)胞內(nèi)成分產(chǎn)生不同折光率造成光學(xué)差異,故固定不良是造成切片染色模糊不清的主要原因。

(2)在日常病理制片中淋巴結(jié)處理不當(dāng)造成切片染色后組織見(jiàn)發(fā)灰現(xiàn)象,其主要原因由于細(xì)胞密集,結(jié)構(gòu)復(fù)雜導(dǎo)致固定液難以滲透到組織深部,從而造成組織中央固定不佳,而出現(xiàn)徹底發(fā)灰現(xiàn)象。可用等量無(wú)水乙醇乙醚混合液處理切片5-10分鐘,乙醇洗,水洗,3%硫酸鐵銨溶液補(bǔ)充媒染5分鐘既可。

(3)送檢標(biāo)本部分用乙醇固定組織,常溫下乙醇的白蛋白,球蛋白不再溶于水,而核蛋白則可溶于水。故乙醇固定標(biāo)本切片,切片染色不良,細(xì)胞質(zhì)染色較差。切片出現(xiàn)模糊不清現(xiàn)象,其補(bǔ)救辦法用4%中性甲醛對(duì)標(biāo)本再固定。


3.其他原因

3.1溫度:

包埋/切片后烤片溫度過(guò)高,均會(huì)使蛋白發(fā)生質(zhì)變可能發(fā)生拒染,造成切片染色模糊不清。

3.2染料:

質(zhì)量差或溶液配制不當(dāng),如配制蘇木精時(shí)加熱使氧化過(guò)度,不能生成三氧化蘇木紅生成四氧化蘇木紅使染液沒(méi)有染色能力或蘇木精使用時(shí)間過(guò)久,導(dǎo)致切片著色能力或蘇木精使用時(shí)間過(guò)久,導(dǎo)致切片著色不良,切片模糊不清。

3.3分化過(guò)度,細(xì)胞核著色淡

3.4脫水

透明不徹底:切片如在二甲苯中有白霧現(xiàn)象發(fā)生即表示乙醇脫水未盡,應(yīng)立即返回重新脫水。否則,鏡下組織結(jié)構(gòu)模糊不清。

3.5封固

(1)注意避免封片者口鼻呼出氣接觸組織上封劑,因呼出氣體中會(huì)含水分。

(2)在潮濕環(huán)境中動(dòng)作要快,以免空氣水進(jìn)入封固內(nèi)響質(zhì)量。